α-法尼烯是一种珍贵的倍半萜化合物,广泛应用于化妆品、生物燃料和制药领域。然而传统 α-法尼烯的制备主要依赖植物提取和石油化工,不仅效率低、成本高,还伴随较大碳排放。微生物发酵虽更环保,但常用底物为葡萄糖、蔗糖等粮食资源,成本高昂。
面对这一合成难题,近日,江南大学陈修来研究团队在 Systems Microbiology and Biomanufacturing 期刊发表了一篇题为“Evolutionary engineering of Pichia pastoris for α-farnesene biosynthesis from methanol”的研究论文,该研究团队选择了更可持续的碳源——甲醇,并首次系统性构建了以甲醇为唯一碳源的毕赤酵母工程菌,实现了从甲醇到 α-法尼烯的高效生物合成,最终在发酵反应器中达到产量 3.28g/L,为以非粮碳源制造高值萜类化合物提供了全新解决路径。
为了实现甲醇向高值化合物的高效转化,研究团队首先选择了天然具备甲醇代谢能力的毕赤酵母(Pichia pastoris)作为底盘菌株,并开展了一系列代谢工程优化。
在对毕赤酵母野生型 X-33 菌株的初步代谢通量评估中,研究人员发现其内源性甲羟戊酸(MVA)通路活性极低,难以满足 α-法尼烯合成所需的前体供应。
图 | 从甲醇到 α-法尼烯的合成路径
针对这一瓶颈,团队设计了三阶段代谢工程策略:在第一阶段,他们从多个植物来源筛选 α-法尼烯合酶基因,最终选定苹果来源的 MdDFS 作为最优元件,并与内源 ERG20 基因(编码法尼基焦磷酸合酶)通过基因融合构建双功能表达模块,引入基础工程菌株中,从而建立了 α-法尼烯的初始合成路径,工程菌株产量初步达到 87.3 mg/L;在第二阶段,基于代谢流分析结果,研究人员重点增强了 MVA 通路的上游部分,通过过表达关键酶 ERG10、ERG13 和截短型 HMG-CoA 还原酶(tHMG1),从而进一步提升关键前体中间体的合成速率,使 α-法尼烯产量提高至 148.3 mg/L;在第三阶段,团队则聚焦下游合成路径,通过 CRISPR-Cas9 技术将 ERG12、ERG8、ERG19 和 IDI1 的额外拷贝整合至基因组中,同时优化其表达强度,最终构建出产量达 172.1 mg/L 的稳定高产菌株。
通过该三阶段工程策略,研究团队系统性的增强了甲醇到目标产物的整体转化效率,为后续优化打下了基础。
然而,研究人员发现,当甲醇浓度超过 30g/L 时,高浓度甲醇会对微生物细胞造成强抑制性,造成菌株生长和产量的急剧下降。
图|适应性实验室进化(ALE)提高菌株甲醇耐受性的实验流程及进化菌株的性能提升效果
为此,团队采用了适应性实验室进化(ALE)技术,即让菌株在逐步提高的甲醇浓度下(从 30g/L 到 50g/L)连续传代。最终经过 640 小时的“自然选择”,获得的进化菌株 P.pastoris evol3-4 展现出惊人的甲醇耐受性——该菌株在 50g/L 甲醇中,其生物量比原始菌株高 7.35 倍,甲醛积累量增加 634%,α-法尼烯产量提升 27.2%。组学分析显示,进化菌株可通过重编程代谢流和增强 DNA 修复能力,有效缓解甲醇毒性。
为了进一步提升产量,团队又利用常压室温等离子体(ARTP)诱变技术,对进化菌株进行全基因组随机突变,并通过 96 孔板和 24 孔板的两轮筛选,从 480 个突变体中选出了最优菌株 P.pastoris ceg3-8,其 α-法尼烯产量达到 449.4 mg/L,较进化前菌株翻了一倍。
最终,在 5L 生物反应器中,研究者采用补料分批发酵策略控制甲醇浓度(维持在 0.5-2 g/L),并引入十二烷作为萃取相以减少产物积累对细胞的毒性,多种策略优化后,工程菌菌株的 α-法尼烯产量飙升至 3.28 g/L,生成速率达到 22.8 mg/L/h,成功实现了甲醇到 α-法尼烯的高效转换。
图 | 5L 生物反应器中 α-法尼烯的发酵生产曲线
总之,该研究利用代谢通路优化、实验室进化强化耐性和全基因组诱变筛选等多种策略,构建了一个适用于甲醇底物的高效“微生物工厂”,实现了 α-法尼烯的高效合成,这一方法不仅可用于倍半萜类产品,还可延展至单萜、二萜、甚至类固醇、烯烃类平台化学品,为未来“非粮生物制造”打下基础。
参考文献:
1. Gu, Z., Chai, T. & Chen, X. Evolutionary engineering of Pichia pastoris for α-farnesene biosynthesis from methanol. Syst Microbiol and Biomanuf 5, 1039–1049 (2025). https://doi.org/10.1007/s43393-025-00372-1
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